Par R. Bourdeix, 10 Novembre 2019
Cet article présente deux méthodes utiles pour évaluer précisément les besoins en fertilisation des cocotier. La plus répandue est le diagnostic foliaire mais, notamment au Brésil, des analyses de sols sont aussi réalisées.
A noter qu'une fiche technique de la Direction de l’Agriculture de Polynésie Française recense et illustre les différents types de carence minérale et propose des barèmes d’application d’engrais pour rétablir une bonne nutrition. Si l’on utilise de la matière organique au lieu d’un engrais minéral, il faut déterminer son contenu minéral avant d’en faire usage, afin de s’assurer que les palmiers sont correctement fertilisés.
Cet article présente deux méthodes utiles pour évaluer précisément les besoins en fertilisation des cocotier. La plus répandue est le diagnostic foliaire mais, notamment au Brésil, des analyses de sols sont aussi réalisées.
A noter qu'une fiche technique de la Direction de l’Agriculture de Polynésie Française recense et illustre les différents types de carence minérale et propose des barèmes d’application d’engrais pour rétablir une bonne nutrition. Si l’on utilise de la matière organique au lieu d’un engrais minéral, il faut déterminer son contenu minéral avant d’en faire usage, afin de s’assurer que les palmiers sont correctement fertilisés.
Analyses Foliaires
L'analyse foliaire (AF) est un outil de base utilisé dans la gestion de la nutrition minérale des cocoteraies. La méthode d’échantillonnage est présentée ci-dessous à l'usage des agriculteurs. l'AF est utilisé dans trois cas:
- Échantillonnage régulier dans une grande plantation, structuré en unités d'échantillonnage de feuilles (LSU), en vue de l'établissement de calendriers annuels pour les engrais (généralement effectués chaque année).
- Surveillance de la réponse des cocotiers à la fertilisation lors d'essais au champ, sur la base d'un protocole d'essai permettant l'analyse statistique.
- Échantillonnage spécial pour traiter un problème particulier (carence minérale présumée, etc.). Dans chaque cas, un plan d'échantillonnage devrait être adopté pour le choix des cocotiers à échantillonner.
Un petit exploitant ayant une cocoteraie d'un hectare peut prélever environ 20 cocotiers au hasard dans la plantation et récolter environ 4 folioles par palmier. Il est dans l'intérêt des agriculteurs de se regrouper en coopératives ou ONG afin de faciliter la procédure et d'obtenir de meilleurs prix.
Le coût de l'analyse varie selon les pays. Au Cirad (France), une analyse de haute qualité (azote, phosphore, potassium, magnésium, chlore et bore ensemble) coûte environ 80 USD plus les frais d’envoi; en Indonésie, les analyses coûtent environ 30 USD plus l'envoi Les grandes plantations de palmiers à huile aux Salomon effectuent leur analyses en Nouvelle-Zélande. Une telle analyse est probablement possible dans la région du Pacifique (Fidji?), mais nous ne connaissons pas de laboratoire.
Date et fréquence de l'échantillonnage des feuilles
Dans les grandes plantations bien gérées, la fréquence des AF est généralement annuelle. Dans ce cas, comme un effet saisonnier est toujours possible sur le contenu des feuilles, il est essentiel de fixer la même période d'échantillonnage qui sera systématiquement respectée. Les petits exploitants et/ou leurs coopératives peuvent également utiliser cette technique, en particulier en cas de suspicion de carence en minéraux. L'échantillonnage peut être effectué moins souvent afin de réduire les coûts d'analyse.
L'échantillonnage ne doit pas avoir lieu en période humide (il est nécessaire d'attendre 36 heures après une pluviosité de plus de 20 mm), Les échantillons sont généralement prélevés en saison sèche si les sites sont à saisons marquées. Idéalement, les échantillons ne devraient pas être prélevés à la fin de la saison sèche: parfois les feuilles ne s'ouvrent pas régulièrement, et la détermination des rangs de feuille 1, 9 et 17 devient de plus en plus difficile et moins précise. La période optimale est donc juste au début de la saison sèche. Ce n’est pas une obligation stricte, d’autres exigences pouvant jouer un rôle, par exemple la nécessité d’obtenir des résultats avant la fin de l’exercice budgétaire afin d’inclure les commandes d’engrais minéral ou organique. Il y a donc une certaine flexibilité dans le choix de la période, à condition d'éviter les périodes très humides.
Méthode d'échantillonnage
Des enveloppes en papier kraft sont préparées la veille pour identifier les échantillons à prélever; chaque équipe reçoit son programme de travail et son itinéraire sur lequel les groupes de cocotiers sont indiqués. Il y aura deux enveloppes similaires à préparer (l’un des échantillons étant envoyé à un laboratoire spécialisé et l’autre reste en réserve à la plantation). Les échantillons sont prélevés le matin, de 6 h à 11 h. Une équipe standard comprend un chef expérimenté possédant une bonne connaissance de la phyllotaxie, une faucille de récolte avec un manche adapté à la hauteur des cocotiers à échantillonner, et un ou deux assistants. Pour chaque cocotier de l'échantillon, il est nécessaire:
- D'identifier sans erreur la fronde à échantillonner (rang 14 pour le cocotier),
- De couper un nombre donné de folioles (4 à 6) dans la partie centrale de la feuille, à parts égales de chaque côté du rachis. Les folioles endommagées ou attaquées par des insectes doivent être jetées.
Les folioles ne doivent pas tomber au sol où elles pourraient être contaminées par la terre ou des engrais. Il faut placer ces folioles ensemble dans des enveloppes ou des boîtes étiquetées et vérifiez attentivement les informations qui y figurent.
Les enveloppes doivent rester ouvertes à tout moment pour permettre la transpiration des tissus des feuilles et elles doivent être suffisamment grandes pour que les folioles ne dépassent pas, même lorsque les enveloppes sont ouvertes.
Les enveloppes doivent rester ouvertes à tout moment pour permettre la transpiration des tissus des feuilles et elles doivent être suffisamment grandes pour que les folioles ne dépassent pas, même lorsque les enveloppes sont ouvertes.
Évitez de couper toute la feuille, bien qu'il soit possible de couper un nombre de folioles supérieur au nombre nécessaire pour faciliter l'identification de la fronde lors du contrôle du rang d'échantillonnage.
En cas de pluie faible, continuez l'échantillonnage pour terminer l'opération d'échantillonnage en cours, mais arrêtez-vous si la pluie devient plus forte. Entre 11 heures et midi, l’échantillonnage doit être terminé et les échantillons transportés pour être emballés.
Préparation des échantillons
Dans l'idéal, les échantillons frais apportés du terrain devraient être traités le même jour: les échantillons prélevés le matin sont donc préparés l'après-midi. Le but de la préparation est d’obtenir des échantillons en double. L'un sera envoyé au laboratoire pour analyse, l'autre sera conservé comme sauvegarde jusqu'à la réception des résultats du laboratoire. Certaines plantations préfèrent constituer leurs échantillons en double lors de l'échantillonnage sur le terrain. D'autres équipes composent leurs échantillons en double lors du nettoyage, en utilisant chaque demi-foliole. L'essentiel est que chaque cocotier soit représenté de manière égale dans chaque échantillon.
La zone de préparation doit être propre, ventilée et sèche. La partie centrale de la foliole est coupée (longueur de l’échantillon: 10 à 15 cm) et les arêtes extérieures, ainsi que la nervure médiane, sont jetées (elles se détachent très facilement en bandes). La feuille est ensuite essuyée avec un coton imbibé d’eau distillée, pour éliminer la poussière et les impuretés qui fausseraient le résultat.
De l'eau distillée ou déminéralisée doit être utilisée afin de ne pas polluer le tissu des feuilles avec des minéraux contenus dans de l'eau ordinaire. Cela consiste simplement à essuyer chaque côté de la lame sans tremper. Les morceaux de coton doivent être changés fréquemment car ils deviennent sales. Les morceaux de folioles sont ensuite répartis sur des plateaux et placés dans le four: un plateau par échantillon, en vérifiant qu’il est strictement identifié avec une étiquette provisoire parfaitement lisible.
Séchage
Les échantillons sont laissés dans le four pendant la nuit. L'idéal est d'avoir un four avec un thermostat et des grilles empilées à l'intérieur pour optimiser le volume des tissus à sécher. Plus les morceaux de folioles sont étalés sur les plateaux, plus le séchage sera rapide et uniforme. La température idéale se situe entre 70 et 80 ° C pendant 8 à 10 heures, c’est-à-dire qu’en pratique, une nuit complète au four: les plateaux placés au four en fin d’après-midi sont retirés le lendemain matin. Quand ils sortent du four, les échantillons doivent être de couleur beige et cassants. S'ils sont trop verts, le séchage est incomplet; trop brun ou noir et le séchage a été excessif. L'uniformité de la couleur et la consistance reflètent l'uniformité du séchage.
Pour l'analyse complète d'un échantillon, 25 à 30 grammes de matière sèche suffisent largement. Le temps de séchage et les coûts d'expédition (par avion) sont ainsi réduits. À défaut d'un four de laboratoire étalonné, des fours domestiques ou des plaques chauffantes peuvent être utilisés, à condition que la température soit contrôlée à une valeur constante. Il convient également de mentionner la possibilité de fabriquer facilement un four électrique fait maison chauffé par des rayons infrarouges (par exemple, des lampes infrarouges de 250 Watt) ou des ampoules à incandescence.
L'utilisation d'un four à micro-ondes n'est pas recommandée. Par expérience, nous recommandons aux producteurs qui préparent régulièrement un grand nombre d'échantillons de feuilles d'investir dans un nombre suffisant de fours de laboratoire de la taille appropriée pour répondre à leurs besoins. Un tel équipement garantit de bons résultats.
Emballage
Le lendemain matin, à la sortie du four, les échantillons sont emballés dans des sacs en plastique ou en papier hermétiquement fermés portant l’identification définitive figurant sur une étiquette de format standard. Avant de refermer les sacs en plastique, il convient de vérifier soigneusement que les échantillons ont été correctement séchés (sinon, il y aurait un risque de développement de moisissures qui rendraient l'échantillon inutilisable). Les étiquettes doivent être clairement visibles de l'extérieur sans avoir à ouvrir le sac. Les informations à marquer sur les étiquettes diffèrent selon le type d'exploitation concerné. S'il s'agit d'une plantation commerciale, elle doit contenir: le nom de l'entreprise; Biens; Division; Terrain; numéro d'unités d'échantillonnage de feuilles (LSU); Date d'échantillonnage des feuilles; nombre de palmiers et rang des frondes échantillonnées.
Expédition
Si le prestataire d'analyse est le CIRAD, l'expédition ne doit être réalisée que si les deux conditions suivantes sont remplies: - vous avez reçu une estimation des coûts de la part du Cirad et vous nous l'avez renvoyée, signée de votre société. Le feu vert est donné par un agronome du Cirad (personne de contact pour votre dossier) pour envoyer les échantillons. Au moment de l'expédition, une copie du dossier est envoyée par fax ou par courrier électronique à la personne de contact au Cirad: date d'expédition, nom du transporteur, numéro AWB, liste des échantillons et éléments à analyser. Les sacs en plastique doivent être regroupés par catégorie et emballés dans un colis. La liste complète des échantillons contenus doit être marquée sur le colis (une copie de cette liste doit être envoyée séparément au Cirad) et la liste des éléments nutritifs à analyser doit être à nouveau indiquée (liste préalablement établie avec un ingénieur agronome du Cirad).
L'adresse complète avec le nom du destinataire doit être indiquée pour éviter toute perte de temps lorsque le colis arrive au CIRAD. En termes de douane, aucun permis n'est requis pour importer du matériel végétal sec dans l'Union européenne. Par conséquent, "Contenu: feuilles de cocotier séchées, sans valeur commerciale" doit être écrit sur le colis.
Le reçu
À l'arrivée du colis, l'agronome vérifie que le contenu est correct et envoie un accusé de réception à l'expéditeur. Le processus d'analyse est alors lancé. Le duplicata de chaque échantillon est conservé à la plantation jusqu'à la réception des résultats finaux des originaux. Il s’agit d’une mesure de sécurité: il existe des doublons en cas de perte d’originaux ou de vérification. Certains échantillons de feuilles correctement séchées et emballées peuvent être conservés tels quels pendant plusieurs mois, voire plusieurs années.
Service limité à l'analyse.
Les services fournis par le Cirad comprennent l'analyse d'échantillons et la vérification de la qualité des résultats obtenus. Ce contrôle consiste à reproduire l’analyse de quelques échantillons détectés par recoupement des informations à deux niveaux: 1) par rapport aux résultats des années précédentes, dans les cas où les mêmes échantillons sont régulièrement analysés, 2) conformément aux équilibres connus des nutriments (N et P, K et Ca ...) lorsque seuls ses résultats sont disponibles. Une telle vérification ne fournit généralement aucune information agronomique.
Évaluation agronomique des résultats.
Il s’agit de juger des résultats d’analyse ou de leurs tendances annuelles en fonction d’autres variables fournies par le client: âge des plantations, origine du matériel de plantation, fertilisation, etc. Ce service donne lieu à un rapport faisant état de la répartition des résultats et à les niveaux atteints à l'échelle agronomique. Au Cirad, l'agronome en charge peut transmettre des devis détaillé: Jean Ollivier, Tel: °33 467615634, email: jean.ollivier@cirad.fr
Interprétation agronomique et recommandations.
Ce service est généralement couvert par un accord incluant une visite à la plantation par l'expert. La nature du sol et les caractéristiques intrinsèques de la plantation (type de sol, topographie, etc.) sont prises en compte pour une interprétation en profondeur des résultats et pour la formulation de recommandations d'engrais minéraux ou organiques.
Analyse et gestion des sols
Une partie de cette section est traduite et adaptée par R. Bourdeix à partir du document "Tecnologias para produção intensiva de coco anão / José Simplicio de Holanda, Marcos Tomaz de Oliveira, Ernesto Espínola Sobrinho, & Tarcísio Batista Dantas. – Natal : EMPARN, 2007. 40 p.: (Boletim de Pesquisa, n. 34)."
Le cocotier ne tolère pas les sols excessivement argileux, ceux qui sont compactés et contiennent des couches imperméables qui empêchent la pénétration des racines ou créent une mauvaise aération. A noter cependant que la culture le long de canaux, lorsque les cocotiers sont plantés sur les berges, permet d'obtenir de très bons rendements sur des sols argileux. Les sols contenant une proportion excessive de graviers sont à éviter. Le système racinaire se développe mieux et exploite un plus grand volume dans les sols sablonneux.
La bonne santé nutritionnelle des cocotiers est nécessaire à la production de fruits. La quantité d'éléments nutritifs extraits par la culture peut atteindre des valeurs élevées, sachant que la productivité peut être comprise entre 150 et 250 fruits par plante et par an (sur 50 ans de culture). L'existence d'un déficit nutritionnel réduit le nombre de fleurs femelles par inflorescence, le taux de fécondation des fleurs et augmente les avortements de fruits. Pour un programme de production intensive de noix, il est indispensable que les nutriments essentiels à la culture soient fournis pendant les périodes de demande, en quantités suffisantes.
La bonne santé nutritionnelle des cocotiers est nécessaire à la production de fruits. La quantité d'éléments nutritifs extraits par la culture peut atteindre des valeurs élevées, sachant que la productivité peut être comprise entre 150 et 250 fruits par plante et par an (sur 50 ans de culture). L'existence d'un déficit nutritionnel réduit le nombre de fleurs femelles par inflorescence, le taux de fécondation des fleurs et augmente les avortements de fruits. Pour un programme de production intensive de noix, il est indispensable que les nutriments essentiels à la culture soient fournis pendant les périodes de demande, en quantités suffisantes.
Dans l’optique d’une nutrition équilibrée dans cocoteraies, l’évaluation de la fertilité des sols constitue la base de la connaissance pour la planification et l’utilisation de correctifs et d’engrais. La correction de l'acidité du sol profite à la culture sous trois aspects: elle neutralise la toxicité de l'aluminium et du manganèse, augmente l'apport de calcium et de magnésium dans le sol et augmente le pH en fournissant des éléments nutritifs.
La méthode la plus utilisée pour la recommandation du calcaire dans la correction de l'acidité du sol est celle de la saturation en bases, qui, dans le cas du cocotier, correspond à 60% de la valeur souhaitée. Pour les sols sableux, les doses de calcaire correcteur de l’acidité se situent généralement entre 2,0 t.ha-1 et 3,0 t.ha-1.Une fois que la recommandation corrective a été établie, l'étape suivante consiste à vérifier l'équilibre entre les cations du sol afin de renforcer l'apport des nutriments présents dans une proportion défavorable, en évitant les problèmes d'interaction compétitive pouvant gêner l'absorption par les plantes. . Pour le potassium, le calcium et le magnésium, la plage d'aptitude dans le sol est comprise entre 1: 9: 3 et 1: 25: 5.
La méthode la plus utilisée pour la recommandation du calcaire dans la correction de l'acidité du sol est celle de la saturation en bases, qui, dans le cas du cocotier, correspond à 60% de la valeur souhaitée. Pour les sols sableux, les doses de calcaire correcteur de l’acidité se situent généralement entre 2,0 t.ha-1 et 3,0 t.ha-1.Une fois que la recommandation corrective a été établie, l'étape suivante consiste à vérifier l'équilibre entre les cations du sol afin de renforcer l'apport des nutriments présents dans une proportion défavorable, en évitant les problèmes d'interaction compétitive pouvant gêner l'absorption par les plantes. . Pour le potassium, le calcium et le magnésium, la plage d'aptitude dans le sol est comprise entre 1: 9: 3 et 1: 25: 5.
Pour en savoir plus
Malhotra, S. K., Maheswarappa, H. P., Selvamani, V., & Chowdappa, P. (2017). Diagnosis and management of soil fertility constraints in coconut (Cocos nucifera): A review.
Martin, G. (1975). Préparation et conditionnement des échantillons pour le diagnostic foliaire du palmier à huile et du cocotier. Oléagineux, 30(1), 9-11.
Manciot, R., Ollagnier, M., & Ochs, R. (1979a). Nutrition minérale et fertilisation du cocotier dans le monde. I. Oléagineux, 34(11), 499-515.
Manciot, R., Ollagnier, M., & Ochs, R. (1979b). Nutrition minérale et fertilisation du cocotier dans le monde. II. Etude des différents éléments (suite). Oléagineux, 34(12), 563-580.
Manciot, R., Ollagnier, M., & Ochs, R. (1980). Nutrition minérale et fertilisation du cocotier dans le monde. III. Oléagineux, 35(1), 13-27.Jeganathan, M. (1992). Nut water analysis as a diagnostic tool in coconut nutrition studies. Communications in soil science and plant analysis, 23(17-20), 2667-2686.
